Un test de eflux bazat pe proteolipozomi pentru a determina proprietățile unei singure molecule ale canalelor Cl și

Introducere

Abonament necesar. Vă rugăm să recomandați JoVE bibliotecarului dvs.

Protocol

1. Prepararea lipidelor

2. Formarea proteolipozomilor

NOTĂ: Mai multe strategii pot fi folosite pentru a introduce proteina solubilizată în detergent în lipozomi. Pentru CLC-ec1 dializa funcționează bine și, prin urmare, este metoda la alegere 6,9,10.

3. Înregistrați configurarea

NOTĂ: Înregistrarea este configurată (figura 2A) este format din două camere (cilindri cu fund plat,

3-4 ml volum), un electrod Cl - (vezi mai jos), un pHmetru cu ieșire electrică analogică sau digitală, un digitizator și un computer cu software de achiziție adecvat.

  1. Conectați electrodul Cl - pH-metru, ieșirea pH-metrului la digitalizatorul conectat la computer. Așezați electrodul de referință într-o cameră de recodare și firul în cealaltă (figura 2B).
    NOTĂ: Polaritatea firelor este corectă dacă AV Cal (a se vedea pașii 6.4 și 7.2) este pozitivă.
  2. Așezați camerele pe o placă de amestecare cu o bară de amestecare în camera de înregistrare (figura 1B). Asigurați-vă că bara de amestecare nu atinge electrodul.
  3. Conectați camerele folosind un pod de agar (figura 2B) (100 mM KCl și 2% agaroză). Păstrați podurile Agar în KCl 100 mM.

4. Pregătirea Cl - electrod

  1. Luați un electrod pH vechi și, posibil, nefuncțional. Rupeți acoperirea de sticlă pentru a dezvălui complet firele de argint.
  2. Îndepărtați cu atenție învelișul din firele de argint folosind o lamă de bisturiu. Curățați firele folosind cantități mari de H20 și EtOH.
  3. Se pune într-o soluție saturată de FeCl3 (sau înălbitor) până când firele sunt acoperite cu un strat uniform întunecat de AgCl.

5. Pregătirea veziculelor unilamelare

    În noaptea dinaintea experimentelor, umflați 1 g de margele Sephadex G-50 în 15 ml de tampon extern (1 mM KCl, 150 mM K 2 SO 4, 25 mM acid citric, pH 4,5) cu agitare ușoară. (Nu amestecați) timp de cel puțin trei ore la temperatura camerei înainte de utilizare. Fiecare experiență necesită

3 ml de margele umflate. Păstrați mărgelele umflate la 4 ° C cel mult câteva zile. În timp ce lipozomii se decongelează la temperatura camerei, se toarnă în fiecare coloană

3 ml de margele G-50 umflate. Lăsați-i să se usuce prin gravitație la temperatura camerei; durează de obicei 1-2 minute.

  • Pregătiți vezicule unilamelare extrudând proteolipozomii de 11 ori printr-un mini-extruder folosind o cantitate de 0,4 m de teflon.
  • Așezați coloana într-un tub de plastic rotund cu fund. Rotiți coloanele pentru a elimina soluția în exces. Centrifugați timp de 20 până la 30 de secunde la 1400 xg într-o centrifugă clinică.
  • Aruncați fluxul, plasați coloana într-un tub de sticlă de 13 x 100 mm și adăugați 100 pl de vezicule extrudate în coloană. Coloana de centrifugare timp de 1 min la 500 xg într-o centrifugă clinică.
  • Colectarea

    200 ft de scrisori de credit care vor fi adăugate la camera de înregistrare la pasul 6.5.

    6. Măsurarea efluxului

    1. Așezați 2 ml KCl 100 mM în camera de referință (masă) și 1,8 ml tampon extern (1 mM KCl, 150 mM K 2 SO 4, 25 mM acid citric la pH 4,5) la camera de înregistrare. Micul dezechilibru osmotic dintre soluțiile interne și externe nu afectează
    2. Porniți programul de achiziție. Lăsați echilibrul de bază, poate dura câteva minute.
    3. Odată ce semnalul atinge o linie de bază stabilă (lipozomii sunt gata și coloanele uscate), începeți înregistrarea (figura 3A).
    4. Adăugați 15 µl dintr-o soluție de 10 mM KCl pentru a calibra sistemul (figura 2A).
    5. Adăugați lipozomi. Un mic salt ar putea fi vizibil datorită îndepărtării incomplete a proteolipozomilor externi de Cl (figura 3A). Așteptați stabilizarea liniei de bază.
    6. Se adaugă valinomicină (1 pl la 1 mg/ml în EtOH) pentru a iniția efluxul (figura 3A).
    7. Lăsați efluxul să-și urmeze evoluția în timp până la platou (figura 3A).
    8. Adăugați 40 pl de β-octilglucozidă 1,5 M (β-OG) preparată în tamponul extern pentru a dizolva toți lipozomii (figura 3A). Înregistrare completă.

    7. O analiză a datelor

    Abonament necesar. Vă rugăm să recomandați JoVE bibliotecarului dvs.

    Rezultate reprezentative

    1/3 conține lipozomi 0 proteine ​​active. Din aceste valori calculăm că rata de transport unitară este γ

    2500 Cl - sec -1, în acord cu valorile publicate 8.14.

    test
    Figura 1: Testul de eflux Cl (A - B) Reprezentarea schematică a testului Cl - eflux pentru lipozomi fără proteine (LA) sau CLC-CE1.vezicule reconstituite (B). (VS) inițiativă ionoforă simulată dependentă de timp Cl - eflux de proteolipozomi (negri) sau lipozomi fără proteine ​​(linie punctată gri). Efluxul este inițiat prin adăugarea de ionofor (*) și terminat prin adăugarea de detergent pentru dizolvarea lipozomilor (^). Linia punctată roșie este o potrivire exponențială pentru a determina constanta de timp, τ, a lui Cl -. Efluxul de lipozomi care conțin cel puțin o copie activă a CLC-ec1 și f 0 este fracția lipozomilor care conțin 0 proteine ​​active Vă rugăm să faceți clic aici pentru a vedea o versiune mai mare a acestei figuri.